Pathogenic potential of Helminthosporium sp. in chili (Capsicum annumm) and zucchini (Cucurbita pepo) seeds
Keywords:
polyculture, antagonistic symbiosis, germination, fungal diseaseAbstract
Mexico is center of origin and domestication for key crops such as chili peppers and zucchini, which are fundamental to agriculture and are part of the culture, especially in Mexican Indigenous communities. These communities are among the affected by the Mexican agri-food system and constitute 85% of small and medium-scale producers working in agriculture. However, these crops face threats from pathogenic microorganisms that affect their production. Therefore, the objective of this research is to determine the pathogenic potential of Helminthosporium sp. in chili pepper and zucchini seeds using in vitro and in vivo assays. The fungus under study was cultured, isolated, and purified in the laboratory of the General Local Livestock Association of Tapachula AC. An in vitro plate assay was performed to quantify the conidia. Dilutions with different concentrations of the fungus were prepared and applied by spraying to chili pepper and zucchini seeds. The incidence of Helminthosporium sp. was found. The concentration of 1x10? was 10%, and differences were found between treatments (p<0.05), indicating that the Helminthosporium sp. treatments did not affect the physiological development of the seeds. This suggests that there is no risk to embryo imbibition, adaptability, survival, growth, or reproduction of chili peppers and zucchini.
https://doi.org/10.21929/abanicoboletin/2026.4
References
ABDRASSULOVA ZT, Kuzhantaeva ZZ, Anuarova LE. 2014. Biological specifics of some species of fungi on seeds of grain crops. Life Sci J. 11(6):79-82. https://www.lifesciencesite.com/lsj/life1106s/013_24040life1106s14_79_82.pdf
AGRIOS GN. 1999. Fitopatología. Segunda edición, quinta reimpresión. Ed. Limusa - Grupo Noriega Editores. México. Pp. 838. https://infoagronomo.net/fitopatologia-gn-agrios-pdf/
BOEGE E, Chan GV. 2008. El patrimonio biocultural de los pueblos indígenas de México: hacia la conservación in situ de la biodiversidad y agrodiversidad en los territorios indígenas (No. Sirsi) i97896803854). México: Instituto Nacional de Antropología e Historia. México.
EBEL R, Pozas Cárdenas JG, Soria Miranda F, Cruz González J. 2017. Manejo orgánico de la milpa: rendimiento de maíz, frijol y calabaza en monocultivo y policultivo. Terra Latinoamericana. 35(2): 149-160.
https://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0187-57792017000200149
ELENA C, Magadan F. 2023. Procesamiento histológico rutinario de los tejidos. In CIBAMANZ-2023. https://cibamanz2023.sld.cu/index.php/cibamanz/2023/paper/view/248/140
EL-ISHAQ A, Bello H, Sunday IE. 2015. Determinación de actividades enzimáticas en cuatro granos seleccionados (arroz, mijo, sorgo y maíz) en distintas etapas de germinación. Revista de Biociencias Globales. 4(3):1727-1734.
https://www.mutagens.co.in/index/jgbvol/vol.04_03.html
GOMEZ-ESPINOZA J, Gomez-Gonzalez G. 2006. Agricultural indigenous and farmers traditional knowledge: rescue, sistematization and incorporation to the Ieas. Revista Ra Ximhai. 2(1):97-126. https://dlc.dlib.indiana.edu/dlcrest/api/core/bitstreams/6c8bf553-a25e-4088-99c2-4bbb411224c1/content
HOFFMAN LM. 2009. Sarna plateada (Helminthosporium solani) una enfermedad de creciente importancia en papa. Agronomía Mesoaméricana. 20(2): 417-431. http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=43713059022
INPI (Instituto Nacional de los Pueblos Indígenas), 2022. Regiones de los planes integrales de desarrollo regional de los pueblos y comunidades indígenas y afromexicanas por municipio, enero 2022. México.
https://www.gob.mx/cms/uploads/attachment/file/722382/Regiones-indigenas-inpi-enero-2022.pdf
IMRANI N, Boudoudou H, Mouria A, Touati J, Touhami OA, Benkirane R, Douira A. 2017. Pathogenicity of Helminthosporium rostrata on rice varieties widely grown in Morocco. IJEAB. 2:1003-1006. http://dx.doi.org/10.22161/ijeab/2.2.58
KEINATH AP, DuBose VB. 2012. Control del mildiú polvoroso en plántulas de portainjertos de cucurbitáceas en invernadero con fungicidas y biofungicidas. Protección de cultivos. 42:338-344. https://www.sciencedirect.com/journal/crop-protection/vol/42/suppl/C
KHAN AM, Khan M, Salman HM, Ghazali HMZU, Ali RI, Hussain M, Nabeel, M. 2023. Detección de hongos patógenos transmitidos por semillas asociados con semillas de trigo (Triticum aestivum L.) recolectadas de campos de agricultores y mercados de granos. Revista de Ciencias de la Universidad Rey Saud. 35(4):e102590.
https://doi.org/10.1016/j.jksus.2023.102590
LEMUS Y, Rodríguez G, Cuervo R, Vanegas JA, Zuluaga CL. 2008. Determinación de la factibilidad del hongo Metarhizium anisopliae para ser usado como control biológico de la hormiga arriera (Atta cephalotes). Revista Guillermo de Ockham. 6(1). https://doi.org/10.21500/issn.2256-3202
LEYVA D, De la Torre M, Coronado YI. 2021. Sostenibilidad de los sistemas agrícolas de los pueblos indígenas de Hidalgo, México. Sostenibilidad. 13(14):e8075. https://doi.org/10.3390/su13148075
LI J, Liu X, Yang X, Li Y, Wang C, He D. 2018. Análisis proteómico de los impactos del oídio en el grano de trigo. Química de los alimentos. 261:30-35. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2018.04.024
LIMA Lanna Natália de Brito, Martins Bardiviesso Estefánia, Santivañez Aguilar Ariel, Ayala Pérez Carolina Paz, Contreras Samuel, Nakada-Freitas Pámela Gomes, Inácio Cardoso Antonio Ismael. 2020. Uso de la temperatura y propóleos en el tratamiento alternativo de semillas de calabacín. Idesia (Arica). 38(4):83-88.
https://dx.doi.org/10.4067/S0718-34292020000400083
MARTINEZ Rivera P, Pina Osuna AK, Soto Domínguez A, García Garza R. 2011. Histological and immunohistochemical comparison of tissue samples processed by the conventional technique or the acetone simplified method. International journal of morphology. 29(2):575-580.
ORA N, Faruq A, Islam M, Akhtar N. 2015. Detection and identification of seed borne pathogens from some cultivated hybrid rice varieties in Bangladesh. Middle East Journal of Scientific Research. 10:482-488. https://www.idosi.org/mejsr/mejsr10(4)11/11.pdf
PATRICIO VJ. 2010. El arroz y su medio ambiente, Parte A: Eco-fisiología de pantas de Arroz. Editores, Degiovanii, V., Martínez, C., Motta, F. Producción Eco-eficiente del arroz en América Latina, Tomo 1. Pp. 513. http://ciat-library.ciat.cgiar.org/Articulos_Ciat/2010_Degiovanni-Produccion_eco-eficiente_del_arroz.pdf
PERALES HR, Aguirre JR. 2008. Biodiversidad humanizada, en Capital natural de México, vol. I: Conocimiento actual de la biodiversidad. Conabio, México. Pp. 565-603. http://www2.biodiversidad.gob.mx/pais/pdf/CapNatMex/Vol%20I/I18_Biodivhum.pdf
PRADO-URBINA Gregorio, Lagunes-Espinoza Luz del Carmen, García-López Eustolia, Bautista-Muñoz Consuelo del Carmen, Camacho-Chiu Wilder, Mirafuentes G Felipe, Aguilar-Rincón Víctor Heber. 2015. Germinación de semillas de chiles silvestres en respuesta a tratamientos pre-germinativos. Ecosistemas y Recursos Agropecuarios. 2(5): 139-149. http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S2007-90282015000200002&lng=es&tlng=es
RASYAD SM, Wulandari AS, Istikorini Y. 2019. Respuesta del crecimiento de plantas de Kopsia (Kopsia arborea Blume) a la aplicación de hongos endofíticos. En Serie de conferencias del IOP. Ciencias de la Tierra y el Medio Ambiente. 394, e012021. https://doi.org/10.1088/1755-1315/394/1/012021
SADER (Secretaría de Agricultura y Desarrollo Rural). 2022. Productores de pueblos originarios, indispensables en el campo mexicano. México.
SÁNCHEZ-PÉREZ Ma. Isabel, Muñoz-Mejía Carmen Yazmín, Quiroz-Velásquez Jesús Di Carlo, Mayek-Pérez Netzahualcoyotl, Hernández-Mendoza José Luis. 2010. Cambios físico-químicos durante la germinación del maíz. Revista mexicana de ciencias agrícolas. 1(1):89-93. http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S2007-09342010000100009&lng=es&tlng=es.
SANZO-MIRÓ M, Simms DM, Rezwan FI, Terry LA, Alamar MC. 2023. An integrated approach to control and manage potato black dot disease: a review. American Journal of Potato Research. 100(5):362-370. https://doi.org/10.1007/s12230-023-09924-4
SLAOUI M, Fiette L. 2011. Procedimientos de histopatología: desde la toma de muestras de tejido hasta la evaluación histopatológica. Evaluación de la seguridad de los medicamentos: métodos y protocolos. Pp. 69-82.
https://link.springer.com/protocol/10.1007/978-1-60761-849-2_4
URBINA CM. 2011. Enfermedades causadas por hongos, fitopatología general, Universidad agropecuaria del trópico seco. ESTELI. Pp. 21. https://martinurbinac.wordpress.com/wp-content/uploads/2011/08/unidad-ii-fitop-general-20111.pdf
VELÁSQUEZ-VALLE R, Amador-Ramírez MD, Medina-Aguilar MM, Lara-Victoriano F. 2007. Presence of pathogens in nurseries and seed of pepper (Capsicum annuum L.) in Aguascalientes and Zacatecas, Mexico. Revista mexicana de fitopatología. 25(1):75-79. https://www.scielo.org.mx/scielo.php?pid=S0185-33092007000100010&script=sci_arttext
VISHUNAVAT K, Prabakar K, Anand T. 2023. Sanidad de las semillas: pruebas y manejo. Malavika Dadlani. 335. https://doi.org/10.1007/978-981-19-5888-5_14
ZAYAS ADP, Ramos M, González M, Guardado MR, Guevara IP, Albanés CN, González LF. 2006. Fitopatógenos en los cultivos de pastos y forrajes en Cuba. Fitosanidad. 10(1):11-18. https://www.redalyc.org/pdf/2091/209116158002.pdf
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